本研究于2019年9月至2020年2月在青岛市口腔医院中心实验室进行,经青岛市口腔医院医学伦理委员会实验动物伦理审批通过(批准号:2019KQYX011)。
99.99%纯钛种植体(威海市威高集团有限公司),种植体设计图见图1;RIV(上海源叶生物科技有限公司);ASP(阿斯利康,英国);丙泊酚(西安力邦制药有限公司);咪达唑仑(杭州瑞太医药科技有限公司);盐酸阿替卡因(碧兰,法国);恩诺沙星注射液(拜尔,德国);Micro-CT(μCT-100,SCANCO Medical AG,瑞士);硬组织切磨系统(EXAKT,德国)。
术后第2、4周均使用Micro-CT扫描每组白兔术区的3颗种植体及其周围组织,并以种植体长轴为中轴线取直径2.8 mm的圆柱形进行扫描和三维模型重建。将种植体顶端向下2 mm设为上界,种植体根部向上2 mm设为下界,两界之间约3 mm设定为感兴趣区域。使用Evalustion 6.53图像分析软件(SCANCO Medical AG,瑞士)对BIC进行定量分析。通过肉眼观察Micro-CT图像中灰色骨小梁密度和三维重建图像中红色骨组织体积,来比较骨密度;再通过三维模型重建图像计算并比较每组感兴趣区域BIC的差异。计算公式:BIC=螺纹内新生骨面积/螺纹内腔总面积× 100%。
1. 2. 5 种植体-骨组织标本及组织学染色
术后第2、4周,分别各沿5颗种植体长轴切取种植体-骨组织标本。制成长10 mm、宽10 mm、厚15 mm的不脱钙种植体-骨组织磨片。行亚甲基蓝-酸性品红染色,通过观察磨片中骨小梁稀疏程度确定骨密度。计算感兴趣区域的BIC。计算公式:BIC=螺纹内骨结合长度/螺纹内腔总长度× 100%。
3组三维模型重建图像BIC的比较结果显示,随着时间的延长,3组BIC逐渐升高(F = 55.812,P < 0.001);不同测量时间点3组BIC的比较,差异有统计学意义(F = 19.007,P < 0.001);且随着时间的延长差异无明显变化(F = 0.031,P = 0.970)。其中术后第2、4周,空白对照组及RIV组的BIC均大于ASP组,差异均有统计学意义(均P < 0.05);而空白对照组与RIV组BIC的比较,差异无统计学意义(P > 0.05);且每组第4周的BIC均大于第2周,差异均有统计学意义(均P < 0.05)。见表1。
可清晰观察到新生骨与基骨之间的界限,细长的新生骨小梁相互交织,且大部分位于种植体螺纹腔内。间质内有较多成骨细胞、成纤维细胞、血管及类骨质。空白对照组和RIV组相对于ASP组新生骨小梁较多,主要集中于种植体螺纹侧壁上。术后第4周相较于第2周种植体周围新生骨量及骨小梁密度明显增加。见图5。
3组染色图像BIC的比较结果显示,随着时间的延长,3 组BIC 逐渐升高(F = 109.380,P <0.001);不同测量时间点3组BIC的比较,差异有统计学意义(F = 67.609,P < 0.001);且随着时间的延长差异无明显变化(F = 2.459,P = 0.107)。其中术后第2、4周,空白对照组及RIV组的BIC均大于ASP组,差异均有统计学意义(均P < 0.05);而空白对照组与RIV组BIC的比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。且3组第4周BIC均大于第2周,差异均有统计学意义(均P < 0.05)。见表2。
-- 参 考 文 献 --
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